Chenopodium album

Le chénopode blanc (Chenopodium album L.), ou ansérine blanche, est une espèce de plantes annuelles de la famille des Amaranthaceae, l'une des environ 250 espèces[1] du genre Chenopodium qui doit son nom à ses feuilles (d'un vert blanchâtre) en forme de patte d'oie. C'est une plante pionnière et nitrophile fréquente dans les lieux anthropisés (cultivés notamment ou fraichement perturbés)[2]. Originaire de l'ouest de l'Asie[3], elle est naturalisée dans une grande partie de l'Europe, du Moyen-Orient et d'Afrique du Nord et récemment introduite dans d'autres régions ou continents (Australie)[4]. Cultivée dans divers pays du monde[5],[6], elle a des vertus médicinales et une haute valeur alimentaire[3].

Étymologie, dénominations[modifier | modifier le code]

  • Nom scientifique valide : Chenopodium album L., 1753[7]. Le nom de genre vient du grec χήνα (chéna), oie, et πόδι (podi), pied : feuilles en forme de patte d'oie ; et le nom d'espèce (album) évoque la couleur blanche en latin.
  • Noms vulgaires (vulgarisation scientifique) recommandés ou typiques en français : chénopode blanc, ou ansérine blanche[8],[9].
  • Autres noms vulgaires ou noms vernaculaires (langage courant), pouvant désigner éventuellement d'autres espèces : Senousse[10],[8], Drageline[8], Poule-grasse[2],[8] et au Canada : Poulette grasse[9] ou encore Chou gras[11],[9], mais aussi Blé-blanc[réf. souhaitée], Herbe aux vendangeurs[réf. souhaitée] ou encore Dame (en Champagne)[réf. souhaitée], et aussi Farinouse ou Chou-farinou en Auvergne (de l'occitan farinosa et chaul farinós), Bonnette en Suisse Romandeetc.
  • À la Réunion, il est appelé brède Madame.
  • En Inde, on le nomme Fat Hen, Lamb's-quarters, Pigweed (anglais), mais aussi Bathua (Hindi), Vastukah (Sanskrit), Paruppukkirai (Tamil), Chandanbethu (Bengali), Bathua (Oriya), Kaduoma (Kannada), Pappukura (Telugu), Vastuccira (Malayalam), Chakvit (Konkani).

Description[modifier | modifier le code]

Appareil végétatif[modifier | modifier le code]

Planche botanique.
Tige (pleine, dure, cannelée et à section anguleuse, glabre et parfois farineuse), parfois rougeâtre[12].

Les plantules cotylédons sont elliptiques, à sommet arrondi en massue, allongés, fins et opposés avec les faces inférieures rouge violacé, plus ou moins pétiolés. Les premières feuilles sont simples, opposées, ovales à triangulaires, irrégulièrement dentées. La tige est rougeâtre à la base[12].

La tige mature est pleine, dure, cannelée/striée et à section anguleuse, ramifiée et dressée. Elle est glabre et parfois farineuse. La plante s'élève jusqu'à 30 cm à 2 m de haut, voire exceptionnellement 2,5 m (sa taille est maximale sur des sols fertiles, dystrophes et lourds) ; la tige est vert clair à vert foncé et se teinte parfois de violet ou de rouge en fin d'été.

Les racines sont de type dendritique avec en général une racine centrale nettement plus épaisse, elles sont plus ou moins traçantes et superficielles, selon le type de sol, et peuvent s'étaler autour de la tige jusqu'à plus d'un mètre.

Les feuilles sont plus longues que larges. Les feuilles basses sont alternes, rhombiques à ovales, devenant elliptiques à linéaires (lancéolées) quand on remonte vers le haut de la tige.
Le limbe mesure jusqu'à 10 cm de long. Leur bord est ondulé à profondément denté avec un sommet pointu ; leur couleur est vert clair (blanc-argentée sur la face inférieure).
Elles ont un aspect et une consistance plus ou moins farineuses, surtout sur la face inférieure. La poudre blanc-argenté (pruine) qui couvre la face intérieure des feuilles donne au toucher une sensation d'humidité caractéristique, qui est propre à certains chénopodes. Cet aspect « pruineux » est dû à la présence de minuscules poils globuleux blanchâtres modifiés et gonflés qui sont sessiles (c'est-à-dire se détachant facilement) ; ce sont des glandes aquifères ayant la forme de microbilles, pourvoyeuses d’eau en situation de sécheresse[12] ; ils constituent l'un des critères de reconnaissance des chénopodes[13]).

Appareil reproducteur[modifier | modifier le code]

Les fleurs apparaissant de juin à octobre, petites (2 à 3 mm), bisexuées, vertes à blanchâtres parfois légèrement teintées de rose, dépourvues de pétales, elles sont réunies en glomérules disposés en panicules qui se superposent les uns les autres le long du haut de la tige. Ils présentent parfois aussi un aspect farineux. Le périanthe comporte cinq tépales enserrant un utricule globuleux. Elles portent cinq étamines et un style divisé en deux parties.

Le fruit est un akène contenant chacun une graine petite (1,5 mm en moyenne), lisse, noire et luisante pour la plupart mais on trouve aussi des graines brunes lisses, brunes réticulées et noires réticulées). Les graines restent souvent enveloppée dans l'enveloppe (péricarpe) beige-claire de l'akène. Un pied produit de 30 000 à 70 000 graines par plant selon l'IRIIS[14] et jusqu'à 100 000 selon M. Chauvet (2018)[15] et pouvant survivre 30 à 50 ans dans la banque de graines du sol[14]. La plante produit deux types de graines : à enveloppe dure (dormantes) et à enveloppe souple pouvant germer dès qu'elles sont en contact avec un substrat humide[12].

Confusions possibles[modifier | modifier le code]

L'espèce peut être confondue avec :

  • le chénopode des murs (Chenopodiastrum murale, anciennement Chenopodium murale)
  • le chénopode hybride (Chenopodium hybridum) ;
  • le chénopode rouge (Chenopodium rubrum) ;
  • le chénopode à feuilles de figuier (Chenopodium ficifolium dont les feuilles sont plus allongée et présentent 2 lobes à leur base) ;
  • l'arroche étalée (Atriplex patula, dont la tige se ramifie dès la base et dont les feuilles sont plus triangulaire, hastées à la base ; en outre l'inflorescence est en épi et ses fleurs femelles sont entourées de bractéoles triangulaires à base hastée.
    Le chénopode blanc peut aussi être confondu avec des arroches dont il ne se distingue que par les deux ou quatre premières feuilles qui sont en paires opposées ;
  • le quinoa (Chenopodium quinoa, de la famille des Amaranthaceae selon la classification phylogénétique ou classé parmi les Chenopodiaceae selon la classification de Cronquist). Il évoque l'épazote (Chenopodium ambrosioides ou Herba sancti mariae), toxique (notamment au niveau des graines et de l’huile qu'on en tire), mais l'épazote a une odeur de citronnelle que n’ont pas les autres chénopodes.

L’aspect farineux de toutes ces plantes est moins marqué que chez le chénopode blanc.

Reproduction, dispersion[modifier | modifier le code]

La reproduction ne passe que par les graines, qui semblent principalement transportées par l’eau, des fourmis ou des oiseaux (mais aussi par les engins agricoles). La graine ne germe qu'en surface (de mars à juin, voire jusqu’à septembre en zone tempérée), mais elle peut survivre plusieurs décennies en profondeur[12].

Habitats[modifier | modifier le code]

Dans la nature sauvage ce chénopode a comme biotope primaire les ripisylves et sols riches de bras morts de cours d'eau de grandes vallées alluviales, les lisières forestières nitrophiles[12].

En milieux anthropisés, cette plante en C4 se comporte en rudérale non spécialisée : elle prospère localement dans les sols eutrophes à dystrophes (riches à trop riches en azote), et notamment sur les sols de cultures amendées et fumées, labourés et bien drainés de grandes cultures, de maraîchage ou sur les tas de fumier ou de compost ou à proximité[12]. On la retrouve aussi dans les Vignes et vergers, Jardins, sur les talus et bords de chemins et axes de transports, les terrains vagues, dans presque toutes les zones habitées du monde, sur tous types de sols et sur une large gamme de valeurs de pH[17],[18],[12].

Histoire[modifier | modifier le code]

Cultivé, mangé et utilisé comme plante médicinale dans certaines régions du monde, et ailleurs encore considéré comme mauvaise herbe, le chénopode blanc sauvage a été cueilli et consommé dès la Préhistoire ; il a été un aliment de secours pendant les disettes jusqu'au XIXe siècle[2], et il est encore utilisé comme plante sauvage comestible (voir plus bas).

Depuis les années 1990, en raison de sa facilité de culture, et au vu des études récentes montrant son intérêt en tant que plante médicinale, que plante potentiellement nutraceutique, et en tant qu'aliment de qualité, il suscite un regain d'intérêt en tant que graine[19], et en tant que légume car il compte parmi les légumes qui sont l'une des « sources les moins chères et les plus facilement disponibles de vitamines, minéraux, fibres et acides aminés essentiels en particulier »[20].

Sa valeur nutritionnelle varie probablement selon les souches, les conditions et les zones de culture dans le monde, dans une proportion encore mal connue. En Europe, selon une étude polonaise publiée en 2011, les graines de ce chénopode sont très riches en acides aminés (lysine notamment), mais moins que les graines de quinoa[21].

Utilisation[modifier | modifier le code]

Le chénopode est une plante nutritive[22] et médicinale importante[3].

Dans l'alimentation humaine[modifier | modifier le code]

Riz avec curry de feuilles de Chénopode blanc, oignons et pommes de terre.

Les feuilles fraîches et la tige sont très nutritives. Pande et Pathak montraient en 2010 qu'elles sont une bonne source d'acides aminés (leucine, isoleucine, mais surtout lysine[23], lysine qui est un acide aminé essentiel utilisé en nutrition animale et humaine pour équilibrer les régimes alimentaires ou encore comme antiviral pour le traitement de l'herpès et du zona chez l'Humain). Également riches en minéraux et oligoéléments, elles sont aussi une bonne source de protéines, lipides et fibres[24], vitamines (vitamine C notamment) et fer biodisponible[24]. Les feuilles vertes sont particulièrement riches en calcium[25],[3], en vitamine C et en caroténoïdes[26], ainsi qu'en fer (plus que dans les feuilles d'épinard et de chou, mais moins que dans celles de l'amarante)[3].

Chenopodium album fait l'objet d'une culture vivrière ancienne et importante dans les pays tropicaux et subtropicaux où (en Inde et en Afrique[27] notamment), dans le contexte du réchauffement climatique et de la sous-alimentation, il connait aujourd'hui un regain d'intérêt comme ressource alimentaire précieuse en raison de ses qualités gustatives et alimentaires, de sa facilité de culture dans divers types de sol, et de son potentiel agricole en zone de stress cultural (stress hydrique et salin), altitude (on trouve des souches sauvages jusqu'à 4 700 m)[28], canicules et froid)[3].

Les parties les plus souvent consommées sont la feuille, l'extrémité de tige, la jeune pousse entière.

Le chénopode est généralement cuit à la manière de l'épinard (proche cousin)[2]. Les feuilles sont très riches en protéines, en vitamine A (11600 UI/100g) et en vitamine C, ainsi qu'en calcium. Manger le feuillage cru est déconseillé, d'une part en raison de sa texture farineuse et surtout en raison de sa teneur en saponines, des molécules qui sont généralement un facteur antinutritionnel (le Chénopode blanc contient 3 saponines dont l'une est un seco-glycoside analogue à des composés antérieurement connus chez des Caryophyllales[29] (qui sont également souvent des plantes rudérales nitrophiles)[30], nitrates et acide oxalique, même après un lavage à grande eau. Selon la provenance de la plante, son taux d'acide oxalique varie de 360 à 2 000 mg/100 g, d'après Guil et al. (1996)[31].

  • La cuisson ne détruit que peu les saponines (mais la fermentation lactique les détruit en activant les phytases endogènes de la plante) ;
  • Le trempage des graines active également ces phytases endogènes ;
  • La cuisson ne détruit pas les oxalates. On recommandait donc par précaution aux malades rénaux, hépatiques, arthritiques ou lithiasiques d'éviter le Chénopode. Cependant des usages médicinaux traditionnels anciens retrouvés dans divers pays (en Asie principalement), ainsi que des études récentes (2016, 2017…), en laboratoire et sur le modèle animal, ont montré qu'au contraire et paradoxalement cette plante est un remède et peut avoir une utilisation préventive contre la lithiase urinaire (calculs rénaux ou urinaires)[32],[33].

Le chénopode blanc se congèle très bien juste blanchi. La graine, qui peut se conserver sèche, est aussi comestible[16],[2], cuite en gruau (à la manière de céréales ou avec des céréales, on classe d'ailleurs cette espèce parmi les pseudo-céréales), ou moulue en farine. Chenopodium album est l'une des deux espèces de Chénopode cultivé (en Asie surtout) pour ses graines, l'autre étant Chenopodium quinoa[34],[35], mais il est aussi cultivé ainsi que d'autres espèces proches comme légume.

Selon Amrita Poonia (2021), en raison de sa teneur en composés bioactifs et de ses activités pharmacologiques, Chenopodium album semble pouvoir devenir un aliment (légume) nutraceutique[36].

Dans l'alimentation animale[modifier | modifier le code]

Cette plante est spontanément consommée par le bétail et la volaille.

En pisciculture, une étude a testé durant 45 jours chez la carpe commune (Cyprinus carpio) une supplémentation à base de Chenopodium album (alcoolat|extrait méthanolique aqueux). Pour la plupart des dosages testés, la croissance des poissons a été améliorée, probablement par un bénéfice à la fois respiratoire et immunologique, combiné à une amélioration de l'activité des enzymes digestives[37].

Usages médicinaux[modifier | modifier le code]

Dans le monde et en Asie notamment, le chénopode blanc a des usages médicinaux anciens (dit « Bathua sag » en Hindi, c'est l'une des plantes précieuses de l'ayurveda[3] qui l'utilise couramment contre « les douleurs pectorales, la toux, les douleurs abdominales, l'obstruction pulmonaire et les affections nerveuses »[38], mais il est encore « abondamment utilisé comme aliment et en phytothérapie dans le monde »[3]. On considère que son intérêt médicinal est principalement lié aux composés présents dans ses feuilles et dans ses graines (notamment riches en acides gras et en antioxydants)[39]. Par exemple, ses feuilles (cuites en général) traitent les troubles digestifs, les ulcères gastroduodénaux et certaines maladies du foie.

Plus précisément, on considère (en 2020) que ce chénopode a des effets :

Des études pharmacologiques récentes (pharmacochimie et phytopharmacologie...)[43] ont mis en évidence de nouvelles propriétés médicinales et de possibles nouveaux usages médicaux ou vétérinaires potentiels :

Les racines ne semblent pas avoir eu d'usage alimentaires ou médicinaux traditionnels importants, et n'ont dont pas fait l'objet de beaucoup de recherches. On y a découvert (en 1993) un nouvel amide phénolique (N-trans-féruloyl-4-O-méthyldopamine), qui a montré une activité d'attraction pour les zoospores d'Aphanomyces cochlioides (champignon connu pour infecter certains Chénopodes)[49].

Plante tinctoriale[modifier | modifier le code]

Un colorant vert est obtenu à partir des jeunes pousses.

Autres usages[modifier | modifier le code]

  • Les racines fraîches écrasées donnent un substitut de savon doux.
  • Dans le domaine des nanotechnologies, un extrait aqueux de feuille de C. Alba a pu être utilisé avec succès comme « agent réducteur doux » ayant permis une biosynthèse facile et rapide de nanoparticules d'argent et d'or quasi sphériques (par cristallisation à partir de leurs solutions salines)[50] ;
  • Bioindication : quand et là où elle est densément présente et de grande taille, cette plante nitrophile et « caractéristique des libérations brutales d’azote » peut indiquer[12] :
    • un sol riche à excédentaire en matière organique d’origine animale mal compostées et/ou en nitrates ;
    • la présence de nitrites d'origine agricoles ou autre ;
    • une anaérobiose (source possible de dissociations du complexe argilo-humique avec libération d’aluminium, de fer ferrique et de nitrites ;
    • un travail des sols par temps trop sec.

Phytoconstituants[modifier | modifier le code]

En 2020, divers composés d'intérêt alimentaire, mais aussi d'intérêt pharmaceutiques sont identifiés dans cette plante, dont notamment :

Un nouveau glycoside phénolique (baptisé chenoalbuside)[52] a été découvert dans la graine de C. album (24). Dans sa feuille (20) on connaissait déjà l'acide cinnamique[53] l'acide sinapique[54], l'acide férulique[55] et leurs dérivés[56] ainsi que le méthyl férulate[57].

À propos des flavonoïdes : C. alba en contient (mais moins que dans Chenopodium ambrosoides).

En 2009, les Métabolites primaires (c'est-à-dire directement impliqué dans la croissance, le développement et la reproduction normale de la plante elle-même) identifiés dans C. alba étaient[58] :

  • Pentoses et méthylpentoses : ribosa[59] ;
  • Acides aminés : acide glutamique[59], alanine[59], asparagine[59], lysine[59] ;
  • Constituants non polaires : -n-tétradécane[60], n-pentadécane[60], n-hexadécane[60], n-heptadécane[60], 2,6-diméthylheptadécane[60] 2,6,10,14-tétraméthyl-heptadécane[60], n-octadécane[60], 2-méthyloctadécane[60], acide palmitique[60], palmitate de méthyle[60], palmitate d'éthyle[60], acide stéarique[60], stéarate de méthyle[60], acide linoléique[60],[61], linoléate de méthyle[60], linolénate de méthyle[60], acide oléique[61], n-eicosane[60], n-hénéicosane[60], 9Z, 12Z-octadécadiène-1-ol[60] , n-octacosane[60], n-octacosanal[62], acétate d'octacosanyle[62], n-nonacosane[60], n-pentatriacontane[60], n-tétracontane[60], n-hexadécanal[60], n-octadécanal[60], n-tritétracontane[60] ;

En 2020, au vu de ces constituants et de leurs propriétés, Choudhary Neeraj et ses collègues évoquent outre des effets déjà connus des médecines traditionnelles ou récemment démontrés, de potentiels effets d'antidiabétique, immunomodulateur, herbicide, larvicide, etc.) et ils se sont intéressés au caractère allergène (chez certains personés sensibles) ou à la toxicité aiguë de certains de ces phytoconstituants (flavonoïdes, alcaloïdes, saponine[29], caroténoïdes, amides, stérols, ecdystéroïdes, terpénoïdes et composés phénoliques)[43].

Récolte[modifier | modifier le code]

  • Pour la graine, la plante est récoltée à maturité (à une date variant selon les conditions édaphiques locales).
  • Pour un usage en salade ou légume, la récolte se fait préférentiellement quand la plante est jeune.

Quand le chénopode blanc est à l'état de pousse, la plante peut être récoltée après le deuxième nœud, de manière à pouvoir récolter plus tard les ramifications (avant qu'elles ne soient matures, ou feuilles par feuilles), jusqu'au milieu de l'été ou parfois plus tard.

Dans les deux cas, il est recommandé d'éviter les sites et sols pollués, et donc les plantes et graines trouvées dans les zones exposées à des herbicides et autres pesticides (qui peuvent avoir contaminé les graines).

Herbacée tantôt cultivée, tantôt indésirable[modifier | modifier le code]

Jeune plante.

Le chénopode blanc est considéré comme l'une des adventices les plus répandues, responsable de pertes économiques parfois importantes en agriculture dans le monde entier, quand bien même elle est comestible, consommée depuis des millénaires, et que ses graines peuvent être cuites en céréales ou moulues en farine[63].

Cultivée dans de nombreux pays tropicaux où elle est très appréciée, cette plante a cependant été classée parmi les pires mauvaises herbes du monde[64]. Cela s'explique par ses caractéristiques biologiques : sa capacité à coloniser de nouveaux habitats (pionnière) et à produire de grandes quantités de graines dont la viabilité s'étend sur plusieurs années, son potentiel allélopathique, a permis l'apparition de biotypes résistants aux herbicides[18] et lui a donné une répartition cosmopolite.

Avec d'autres chénopodes, elle fait partie des plantes-réservoirs des pucerons verts du pécher qui transmettent le virus BYV provoquant la Jaunisse de la betterave[65].

Son pollen est allergène pour certaines personnes (asthmatiques…)[66],[67] est considéré comme contribuant aux allergies émergentes[68]. Des recherches portent sur un vaccin contre cette allergie[69].

Méthodes de lutte[modifier | modifier le code]

Le désherbage était autrefois manuel. Aujourd'hui, là où la plante est devenue envahissante (au Canada par exemple)[70], diverses méthodes sont utilisées :

  • recours à des semences « propres »,
  • rotation culturale faisant alterner céréales d'hiver, plantes sarclées et prairies permanentes[17] ;
  • ne pas épandre trop d’azote et de matière incomplètement compostée.
  • fauches, car cette plante ne résiste pas aux tontes fréquentes[14].
  • désherbage thermique (très efficace sur le cotylédon à quatre feuilles) ou mécanique (les outils de sarclage classiques sont efficaces) ;
  • en grande culture, avant le stade deux feuilles, la herse étrille ou la houe rotative sont efficaces, sinon la herse sarcleuse ou la bineuse sont utilisées.

On recommande d'« éviter le renouvellement de la banque de semences dans le sol en entretenant les bords de champs et les allées, et en coupant les plants avant l'apparition des fleurs, car le chénopode blanc a une forte capacité à produire des graines. Nettoyer la machinerie agricole lors de la sortie d’un champ infesté puisque les petites graines restent facilement sur la machinerie »[14].

Les désherbants ont été très utilisés, mais ont favorisé l'apparition de résistances à des herbicides dans différents pays d'Europe ainsi qu'en Amérique du Nord et en Nouvelle-Zélande[71]. Le faux semis oppose au chénopode des plantes concurrentes et réduit le stock de graines, mais deux ans sont souvent nécessaires pour traiter une zone qui a été très envahie l'année précédente[12].

Classification[modifier | modifier le code]

Cette espèce a été décrite pour la première fois en 1753 par le naturaliste suédois Carl von Linné (1707-1778).

Chenopodium album est classée dans la famille des Chenopodiaceae selon la classification classique, ou des Amaranthaceae selon la classification phylogénétique APG III.

Liste des sous-espèces[modifier | modifier le code]

Selon The Plant List (27 septembre 2015)[72] :

  • sous-espèce Chenopodium album subsp. iranicum Aellen
  • variété Chenopodium album var. reticulatum (Aellen) Uotila

Notes et références[modifier | modifier le code]

  1. (en) J. Risi, N. W. Galwey et T. H. Coaker (1984). In Advances in applied biololgy. In: The Chenopodium grains of the andes: inca crops for modern agriculture. Academic, Landon, pp 145-216.
  2. a b c d et e Éric Birlouez, Petite et grande histoire des légumes, Quæ, coll. « Carnets de sciences », , 175 p. (ISBN 978-2-7592-3196-6, présentation en ligne), Légumes d'ailleurs et d'antan, « Légumes-feuilles de jadis », p. 155-159.
  3. a b c d e f g h i j k l et m (en) Shilpa Saini et Kamal Kant Saini, « Chenopodium album Linn: An outlook on weed cum nutritional vegetable along with medicinal properties », emergent Life Sciences Research, vol. 06, no 01,‎ , p. 28–33 (DOI 10.31783/elsr.2020.612833, lire en ligne, consulté le )
  4. (en) Germplasm Resources Information Network (GRIN): espèce Chenopodium album L..
  5. (en) J. B. Miller, K. W. James et P. M. A. Maggiore (1993). Tables of composition of Australian Aboriginal foods. Aboriginal Studies Press.
  6. a et b (en) T. P. A. Devasagayam, J. C. Tilak, K. K. Boloor, K. K. Sane, S. S. Ghaskadbi et R. D. Lele (2004). Review: Free radicals and antioxidants in human health: current status and future prospects. J. Assoc. Physicians India, 52: 794-804.
  7. USDA, Agricultural Research Service, National Plant Germplasm System. Germplasm Resources Information Network (GRIN-Taxonomy). National Germplasm Resources Laboratory, Beltsville, Maryland., consulté le 27 septembre 2015
  8. a b c et d Tela Botanica, <https://www.tela-botanica.org>, licence CC BY-SA 4.0 <https://creativecommons.org/licenses/by-sa/4.0>, consulté le 27 septembre 2015
  9. a b et c Nom en français d'après la fiche de cette espèce dans Brouillet et al. 2010+. VASCAN (Base de données des plantes vasculaires du Canada) de Canadensys.
  10. Nom en français d'après l'Inventaire National du Patrimoine Naturel, sur le site Inventaire National du Patrimoine Naturel (INPN)
  11. Nom en français d’après Termium plus, la banque de données terminologiques et linguistiques du gouvernement du Canada
  12. a b c d e f g h i et j https://draaf.auvergne-rhone-alpes.agriculture.gouv.fr/IMG/pdf/2016_-_Fiche_Chenopode-SERAIL_cle883f32.pdf Fiche : Le Chénopode blanc (Chenopodium album) ; DRAAF/Station Rhône-Alpes Légumes |consulté le=2021-08-31
  13. François Couplan, Eva Styner, Guide des plantes sauvages comestibles et toxiques, Delachaux et Niestlé, , p. 43
  14. a b c et d « IRIIS phytoprotection - Fiche technique, Chénopode blanc - Lamb's-quarters (syn. Common lamb's-quarters) », sur iriisphytoprotection.qc.ca (consulté le ).
  15. Michel Chauvet, Encyclopédie des plantes alimentaires, Paris, Belin, , 878 p. (ISBN 978-2-7011-5971-3), « Amaranthacées »
  16. a et b (en) N. Thoufeek Ahamed, Rekha S. Singhal, Pushpa R. Kulkarni et Mohinder Pal, « A Lesser-Known Grain, Chenopodium Quinoa: Review of the Chemical Composition of its Edible Parts », Food and Nutrition Bulletin, vol. 19, no 1,‎ , p. 61–70 (ISSN 0379-5721 et 1564-8265, DOI 10.1177/156482659801900110, lire en ligne, consulté le )
  17. a et b (en) « Chenopodium album L. - Common lamb's-quarters », sur AgroAtlas (consulté le ).
  18. a et b (en) « fat hen (Chenopodium album) », sur Plantwise Knowledge Bank (consulté le ).
  19. (en) Ahamed N.T., Singhal R.S., Kulkarni P.R., Pal M., (1998). A lesser-known grain, Chenopodium quinoa: Review of the chemical composition of its edible parts. Food Nutr. Bull. 19, 61-70.
  20. a b et c (en) Amrita Poonia et Ashutosh Upadhayay, « Chenopodium album Linn: review of nutritive value and biological properties », Journal of Food Science and Technology, vol. 52, no 7,‎ , p. 3977–3985 (ISSN 0022-1155 et 0975-8402, PMID 26139865, PMCID PMC4486584, DOI 10.1007/s13197-014-1553-x, lire en ligne, consulté le )
  21. (en) K. Gesinski et K. Nowak, « Comparative analysis of the biological value of protein of Chenopodium quinoa Willd. and Chenopodium album L. Part I. Amino acid composition of the seed protein », Acta Scientiarum Polonorum. Agricultura, vol. 10, no 3,‎ (ISSN 1644-0625, lire en ligne, consulté le )
  22. (en) F.O. Jimoh, A.A. Adedapo et A.J. Afolayan, « Comparison of the nutritional value and biological activities of the acetone, methanol and water extracts of the leaves of Solanum nigrum and Leonotis leonorus », Food and Chemical Toxicology, vol. 48, no 3,‎ , p. 964–971 (ISSN 0278-6915, DOI 10.1016/j.fct.2010.01.007, lire en ligne, consulté le )
  23. a et b Milind Pande et Anupam Pathak, « Sexual function improving effect of Chenopodium album (Bathua Saag) in normal male mice », Journal of Forensic Toxicology & Pharmacology, vol. 07,‎ (ISSN 2325-9841, DOI 10.4172/2325-9841-c4-017, lire en ligne, consulté le )
  24. a et b (en) Yadav S.K et Sehgal S (2002) In vitro and in vivo availability of iron from Bathua (Chenopodium album) and spinach (Spinacia oleracia) leaves. Journal of food science and technology (Mysore), 39(1), 42-46.
  25. A. D. Gonzalez, R. Janke and E. H. Rapoport (2003). Valor nutricional de las malezas comestibles. Ciencia Hoy, 13: 40-47
  26. (en) J. L. G. Guerrero et M. E. T. Isasa (1997). Nutritional composition of leaves of Chenopodium species (C. album L., C. murale L. and C. opulifolium Shraeder). Int. J. Food Sci. Nut., 48: 321-327
  27. (en) Gqaza, B. M., Njume, C., Goduka, N. I., et George, G. (2013). Nutritional assessment of Chenopodium album L.(Imbikicane) young shoots and mature plant-leaves consumed in the Eastern Cape Province of South Africa. International Proceedings of Chemical, Biological and Environmental Engineering, 53(19), 97-102.|URL=http://www.ipcbee.com/vol53/019-ICNFS2013-F2005.pdf
  28. a et b S. Kumar, S. Biswas, D. Mandal, H. N. Roy, S. Chakraborty, S. N. Kabir et al., (2007). Chenopodium album seed extract: A potent sperm-immobilizing agent both in vitro and in vivo. Contraception, 75: 71-78.
  29. a et b (en) Catherine Lavaud, Laurence Voutquenne, Philippe Bal et Isabelle Pouny, « Saponins from Chenopodium album », Fitoterapia, vol. 71, no 3,‎ , p. 338–340 (DOI 10.1016/S0367-326X(99)00166-5, lire en ligne, consulté le )
  30. Michel Botineau, Botanique systématique et appliquée des plantes à fleurs, Lavoisier, , p. 339
  31. (en) J.L. Guil, M.E. Torija, J.J. Gimenez, I. Rodriguez-Garcia and A. Gimenez. Oxalic acid and calcium determination in wild edible plants. J Agric Food Chem. 44(7): 1821-1823 (1996).
  32. (en) Sharma, D., Dey, Y. N., Sikarwar, I., Sijoria, R., Wanjari, M. M., et Jadhav, A. D. (2016). In vitro study of aqueous leaf extract of Chenopodium album for inhibition of calcium oxalate and brushite crystallization. Egyptian journal of basic and applied sciences, 3(2), 164-171.|URL=https://www.tandfonline.com/doi/pdf/10.1016/j.ejbas.2016.02.001
  33. (en) « Chenopodium album Linn. leaves prevent ethylene glycol-induced urolithiasis in rats », Journal of Ethnopharmacology, vol. 195,‎ , p. 275–282 (ISSN 0378-8741, DOI 10.1016/j.jep.2016.11.031, lire en ligne, consulté le )
  34. (en) K. R. Kirtikar et B. D. Basu (1918). Indian medicinal plants Vol-3. Bishen Singh Mahendra Pal Singh and periodical experts.
  35. (en) N. Yadav, N. Vasudeva, S. Singh et S. K. Sharma (2007). Medicinal properties of genus Chenopodium album Linn. Natural Product Radiance, 6: 131-134.
  36. (en) Amrita Poonia, « Bioactive Compounds of Fat-Hen (Chenopodium album L.) », dans Bioactive Compounds in Underutilized Vegetables and Legumes, Springer International Publishing, , 1–11 p. (ISBN 978-3-030-44578-2, DOI 10.1007/978-3-030-44578-2_6-1, lire en ligne)
  37. (en) İman Daw Amhamed, Gamaia Ali Mohamed, Ahmed Alhadi Almabrok et Tarek Abdalsalam Salem Altief, « Efficacy of Dietary Chenopodium album Extract on Some Health Parameters, Digestive Enzymes and Growth Performance in Juvenile Cyprinus carpio », Alinteri Journal of Agriculture Science, vol. 33, no 2,‎ , p. 165–176 (ISSN 2564-7814, DOI 10.28955/alinterizbd.412455, lire en ligne, consulté le )
  38. (en-US) Neerja Yadav, Neeru Vasudeva, Sumitra Singh et Surendra K. Sharma, « Medicinal properties of genus Chenopodium Linn. », NPR Vol.6(2) [March-April 2007],‎ (ISSN 0975-1092 et 0972-592X, lire en ligne, consulté le )
  39. a et b (en) Z.R. Nengroo et A. Rauf, « Fatty acid composition and antioxidant activity of Angelica glauca and Chenopodium album seed extracts from Kashmir », Grasas y Aceites, vol. 72, no 1,‎ , e393 (ISSN 1988-4214 et 0017-3495, DOI 10.3989/gya.1149192, lire en ligne, consulté le )
  40. (en) Kaur M., Sharma S., Garg S. et Arora M., « Study of Antibacterial Activity of Chenopodium album Leaves Extract », International Journal of Pharmacognosy and Phytochemical Research, vol. 10, no 01,‎ (ISSN 0975-4873, DOI 10.25258/phyto.v10i01.11923, lire en ligne, consulté le )
  41. a b c d et e (en) Renata Nowak, Katarzyna Szewczyk, Urszula Gawlik-Dziki et Jolanta Rzymowska, « Antioxidative and cytotoxic potential of some Chenopodium L. species growing in Poland », Saudi Journal of Biological Sciences, vol. 23, no 1,‎ , p. 15–23 (PMID 26858534, PMCID PMC4705297, DOI 10.1016/j.sjbs.2015.01.017, lire en ligne, consulté le )
  42. (en) Ali Said, Naveera Naeem, Sami Siraj et Taous Khan, « Mechanisms underlying the wound healing and tissue regeneration properties of Chenopodium album », 3 Biotech, vol. 10, no 10,‎ , p. 452 (ISSN 2190-5738, PMID 33062580, PMCID PMC7519026, DOI 10.1007/s13205-020-02436-6, lire en ligne, consulté le )
  43. a b c d e f g h i j k l m n o p q r s et t (en) Neeraj Choudhary, Kirti S. Prabhu, Shyam Babu Prasad et Amritpal Singh, « Phytochemistry and pharmacological exploration of Chenopodium album : Current and future perspectives », Research Journal of Pharmacy and Technology, vol. 13, no 8,‎ , p. 3933 (ISSN 0974-3618 et 0974-360X, DOI 10.5958/0974-360X.2020.00696.4, lire en ligne, consulté le )
  44. a b c d e f g et h (en) L. A. Usman, A. A. Hamid, N. O. Muhammad et N. O. Olawore, « Chemical constituents and anti-inflammatory activity of leaf essential oil of Nigerian grown Chenopodium album L », EXCLI journal, vol. 9,‎ , p. 181–186 (ISSN 1611-2156, PMID 29259536, PMCID 5698885, lire en ligne, consulté le )
  45. (en) Valentina Amodeo, Mariangela Marrelli, Veronica Pontieri et Roberta Cassano, « Chenopodium album L. and Sisymbrium officinale (L.) Scop.: Phytochemical Content and In Vitro Antioxidant and Anti-Inflammatory Potential », Plants, vol. 8, no 11,‎ , p. 505 (ISSN 2223-7747, DOI 10.3390/plants8110505, lire en ligne, consulté le )
  46. Mansoor Ahmad, « Evaluation of spasmolytic and analgesic activity of ethanolic extract of Chenopodium album Linn and its fractions », Journal of Medicinal Plants Research, vol. 6, no 31,‎ (ISSN 1996-0875, DOI 10.5897/jmpr12.412, lire en ligne, consulté le )
  47. Sibusisiwe Magama et Asita Okorie Asita, « Evaluation of Chenopodium album Linn. Crude Methanolic Leaf Extract for Central Antinociceptive Activity in Albino Mice using the Hot Plate Test », International Journal of Sciences, vol. 3, no 06,‎ , p. 36–44 (ISSN 2305-3925 et 2410-4477, DOI 10.18483/ijsci.1310, lire en ligne, consulté le )
  48. (en) Y. Dai, W.C. Ye, Z.T. Wang et H. Matsuda, « Antipruritic and antinociceptive effects of Chenopodium album L. in mice », Journal of Ethnopharmacology, vol. 81, no 2,‎ , p. 245–250 (DOI 10.1016/S0378-8741(02)00096-X, lire en ligne, consulté le )
  49. (en) Takeshi Horio, Kazuyo Yoshida, Hiroto Kikuchi et Jun Kawabata, « A Phenolic amide from roots of Chenopodium album », Phytochemistry, vol. 33, no 4,‎ , p. 807–808 (DOI 10.1016/0031-9422(93)85278-Y, lire en ligne, consulté le )
  50. (en) Amarendra Dhar Dwivedi et Krishna Gopal, « Biosynthesis of silver and gold nanoparticles using Chenopodium album leaf extract », Colloids and Surfaces A: Physicochemical and Engineering Aspects, vol. 369, nos 1-3,‎ , p. 27–33 (DOI 10.1016/j.colsurfa.2010.07.020, lire en ligne, consulté le )
  51. (en) Ahmed A. Gohara et M. M. A. Elmazar, « Isolation of hypotensive flavonoids from Chenopodium species growing in Egypt », Phytotherapy Research, vol. 11, no 8,‎ , p. 564–567 (ISSN 1099-1573, DOI 10.1002/(SICI)1099-1573(199712)11:8<564::AID-PTR162>3.0.CO;2-L, lire en ligne, consulté le )
  52. (en) G.S. Gupta et M. Behari. Identification of amino acids in certain plants. Agra Univ J Res Sci. 25(1): 63-65 (1977).
  53. (en) M.S. Hifnawy, Y.Y. El-Hyatmy, S.A Kenawy, A.K. Yossef et A.S., Awaad. Carbohydrate, lipid, protein and amino acid contents of Chenopodium murale, Cyperus alopecuroides, Desmostachya bipinnata and Tamarix nilotica as allergic plants. Bull Fac Pharm. 37(2): 99-106 (1999)
  54. (en) C. Brinegar. The seed storage proteins of quinoa. Adv Exp Med Biol. 415: 109-115 (1997).
  55. (en) K. Dolezal, C. Astot, J. Hanus, J. Holub, W. Peters, E. Beck, M. Strnad et G. Sandberg. Indentification of aromatic cytokinins in suspension cultured photoautotrophic cells of Chenopodium rubrum by capillary liquid chromatography/frit-fast atom bombardment mass spectrometry. Plant Growth Reg. 36(2): 181-189 (2002)
  56. (en) Dini, G.C. Tenore et A. Dini. Nutritional and antinutritional composition of Kancolla seeds: an interesting and underexploited andine food plant. Food Chemistry. 92: 125-132 (2005).
  57. (en) J. Kolar, I. Machackova, J. Eder, E. Prinsen, W. van Dongen, H. van Onckelen et H. Illnerova. Melatonin: occurrence and daily rhythm in Chenopodium rubrum. Phytochemistry. 44(8): 1407-1413 (1997).
  58. (en) Kokanova-Nedialkova, Z., Nedialkov, P., et Nikolov, S. (2009). The genus Chenopodium: phytochemistry, ethnopharmacology and pharmacology. Pharmacognosy Reviews, 3(6), 280.
  59. a b c d et e (en) M.U Dahot et Z.H Soomro (1997). Proximate composition, mineral and vitamin content of Chenopodium album. Sci Int (Lahore). 9(4): 405-407.
  60. a b c d e f g h i j k l m n o p q r s t u v w x y et z (en) S. R. Leicach, M. A. Yaber Grass, G. B. Corbino et A. B. Pomilio, « Nonpolar lipid composition of Chenopodium album grown in continuously cultivated and nondisturbed soils », Lipids, vol. 38, no 5,‎ , p. 567–572 (ISSN 0024-4201 et 1558-9307, DOI 10.1007/s11745-003-1497-7, lire en ligne, consulté le )
  61. a et b (en) M. Riaz, M. Rashid et F.M Chaudhary. Lipid fraction and fatty acid composition of Chenopodium album seed oil. Pak J Sci Ind Res. 35(7-8): 279-280 (1993).
  62. a et b (en) J.E. Allebone, R.J. Hamilton, B.A. Knights, B.S. Middleditch et D.M. Power. Cuticular leaf waxes. II Chenopodium album and Lolium perenne. Chem Phys Lipids. 4(1): 37-46 (1970)
  63. François Couplan, Le guide de la survie douce : vivre en pleine nature, Paris, Sang de la terre, , 3e éd., 318 p. (ISBN 978-2-86985-329-4, BNF 45079305), p. 147.
  64. (en) Sigurd Håkansson, Weeds and Weed Management on Arable Land : An Ecological Approach, CABI, , 288 p. (ISBN 978-0-85199-800-8), p. 44-46.
  65. http://www7.inra.fr/hyp3/pathogene/3beyevi.htm#desJaunisse de la betterave.
  66. (en) Fatemeh Vahedi, Mojtaba Sankian, Malihe Moghadam et Maryam Mohaddesfar, « Cloning and Expression of Che a 1, the Major Allergen of Chenopodium album in Escherichia coli », Applied Biochemistry and Biotechnology, vol. 163, no 7,‎ , p. 895-905 (ISSN 0273-2289 et 1559-0291, DOI 10.1007/s12010-010-9093-y, lire en ligne, consulté le ).
  67. (en) Hamid Reza Nouri, Mojtaba Sankian, Fatemeh Vahedi et Danial Afsharzadeh, « Diagnosis of Chenopodium album allergy with a cocktail of recombinant allergens as a tool for component-resolved diagnosis », Molecular Biology Reports, vol. 39, no 3,‎ , p. 3169-3178 (ISSN 0301-4851 et 1573-4978, DOI 10.1007/s11033-011-1083-9, lire en ligne, consulté le ).
  68. (en) Rosalía Rodríguez, Mayte Villalba, Eva Batanero et Oscar Palomares, « Emerging pollen allergens », Biomedicine & Pharmacotherapy, vol. 61, no 1,‎ , p. 1-7 (DOI 10.1016/j.biopha.2006.09.014, lire en ligne, consulté le ).
  69. (en) Leila Roozbeh Nasiraie, Farideh Tabatabaie, Mojtaba Sankian et Fakhri Shahidi, « Construction of a recombinant allergen-producing probiotic bacterial strain: Introduction of a new line for a live oral vaccine against Chenopodium album pollen allergy », Reports of Biochemistry & Molecular Biology, vol. 2, no 1,‎ , p. 16-27 (ISSN 2322-3480, PMID 26989716, PMCID 4757063, lire en ligne, consulté le ).
  70. (en) I. J. Bassett et C. W. Crompton, « The Biology of Canadian Weeds : 32 Chenopodium album L. », Canadian Journal of Plant Science, vol. 58, no 4,‎ , p. 1061-1072 (ISSN 0008-4220 et 1918-1833, DOI 10.4141/cjps78-161, lire en ligne, consulté le ).
  71. (en) « Herbicide Resistant Common Lambsquarters Globally - (Chenopodium album) », International Survey of Herbicide Resistant Weeds (consulté le ).
  72. The Plant List (2013). Version 1.1. Published on the Internet; http://www.theplantlist.org/, consulté le 27 septembre 2015

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